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  • 湖北普美生物科技有限公司成立于2022年,專注于生命科學領域的產品研發、生產與銷售。公司以“創新驅動、品質為先”為理念,致力于為科研人員提供高品質的科研工具和技術支持,助力全球生命科學研究的發展。依托先進的科研團隊和創新的生產技術,截至目前,公司已發表學術論文千余篇,擁有自主知識產權的專利超過百項。
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常見問題
  • Western Blot(WB)實驗中為啥條帶形狀不好看?

    答:可能的原因有:

    1、膠凝的不均勻或聚合不好,建議灌膠前將溶液充分混勻;

    2、某些樣品鹽濃度較高,建議除鹽或將樣品鹽濃度調成一致;

    3、緩沖液陳舊,成分改變,可以重配;

    4、凝膠下面有氣泡,電泳前要先將氣泡趕走;

    5、電泳時溫度過高,可以降低電流或電壓;

    6、樣品中含有不溶性顆粒,建議樣品充分攪拌混勻。


  • Western Blot(WB)實驗中背景高咋回事?

    答:可能的原因有:

    1、膜沒有完全均勻濕透,建議 使用100% methanol浸透膜;

    2、洗膜不充分,可以增加洗液體積和洗滌次數;

    3、電極不平衡或者加樣位置偏斜,可以調整電極和加樣;

    4、封閉物用量不足,可以提高封閉物濃度,孵育時保證封閉液完全浸沒轉印膜;

    5、封閉物使用不當,比如檢測生物素標記的蛋白時不可用脫脂奶粉封閉;

    6、封閉時間不夠,一般情況下室溫37度封閉1小時以上或者4度封閉過夜;

    7、抗體非特異性結合,可以降低抗體濃度,減少孵育時間;

    8、一抗稀釋度不適宜,可以對抗體進行滴度測試,選擇適宜的抗體稀釋度;

    9、一抗孵育的溫度偏高,建議4℃結合過夜;

    10、抗體濃度過高或洗滌不夠,建議降低抗體濃度,增加洗滌次數和時間;

    11、化學顯色底物過多,建議按說明書加入適量的顯色底物。


  • Western Blot(WB)實驗中蛋白條帶位置(大小)不對咋整?

    答:可能的原因有:

    1、膠濃度不對,不同濃度的膠跑出的蛋白條帶的位置可能有所偏差,可以調整濃度;

    2、抗體孵育不充分,建議增加抗體濃度,延長孵育時間;

    3、酶失活,建議直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物;

    4、目的蛋白存在翻譯后修飾或剪切體,建議查詢相關文獻確定;

    5、標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低,建議設置陽性對照比對結果,增加標本上樣量。


  • Western Blot(WB)實驗中有很多雜帶咋回事?

    答:可能的原因有:

    1、目的蛋白有多個修飾位點,本身可以呈現多條帶,建議查閱文獻或進行生物信息學分析,獲得蛋白序列的修飾位點信息,通過去修飾確定蛋白實際大小;

    2、樣本處理過程中目的蛋白發生降解,建議加入蛋白酶抑制劑;樣本處理時在冰上操作;

    3、雜蛋白多,建議處理目的蛋白;

    4、抗體特異性不強,建議使用特異性強的抗體;

    5、抗體孵育時間過久,建議減少抗體孵育時間;

    6、二抗與抗原有交叉反應,建議選擇合適的封閉物;

    7、二聚體或多聚體存在,建議增加蛋白質變性過程及強度;

    8、底物顯色與曝光時間過長,建議縮短顯色及曝光的時間。


  • Western Blot(WB)實驗中膠片是一片空白,是怎么回事?

    答:如果能夠排除下面的幾個問題,那么問題多半出現在一抗和抗原制備上。

    1、二抗的HRP 活性太強,將底物消耗光;

    2、ECL底物中H2O2不穩定,失活;

    3、ECL底物沒覆蓋到相應位置;

    4、一抗選擇不當;

    5、二抗失活。


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